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    談?wù)勗?xì)胞分離實(shí)驗(yàn)的提取步驟!

    發(fā)布時(shí)間: 2020-12-21  點(diǎn)擊次數(shù): 2389次
       原代細(xì)胞分離實(shí)驗(yàn):體外將動(dòng)物某組織,經(jīng)酶法或機(jī)械處理法分離成單細(xì)胞,并在合適的培養(yǎng)基中篩選出特定細(xì)胞,使得目的細(xì)胞得以生存、生長和繁殖。
      1、無菌:確保使用無菌設(shè)備、試劑和技術(shù)收集和處理組織。使用個(gè)人防護(hù)設(shè)備以避免污染。使用0.22微米的膜無菌過濾所有酶和試劑。
      2、切塊:用無菌剪刀或手術(shù)刀將組織標(biāo)本切成小塊(通:常為2x4mm),然后將小塊放入選定的緩沖液、培養(yǎng)基或鹽溶液中。
      3、加酶:將組織清洗三次以消除多余的血液蛋白,然后加入您選擇的酶如膠原酶、蛋白酶、木瓜蛋白酶或胰蛋白酶。通常,約0.5 mg/ml~ 1.5mg/ml的酶。
      4、孵育:將組織樣本在其佳溫度下孵育,通常在37°C下孵育30~ 90分鐘。定期混合或輕輕搖動(dòng)標(biāo)本。
      5、洗滌:通過輕輕移液來分散細(xì)胞(也稱為研磨),然后,使用細(xì)網(wǎng)過濾細(xì)胞懸浮液。讓細(xì)胞沉淀并潷出多余的含液酶;洗兩到三次。含有FBS, BSA或其他抑制劑的洗滌溶液也可用于阻止酶消化。
      6、分析:將細(xì)胞重懸于正確的培養(yǎng)基或緩沖液中,然后定量測(cè)定細(xì)胞產(chǎn)量和活力。這是細(xì)胞分離過程中的重要步驟,因此您可以評(píng)估解離技術(shù)的結(jié)果。大多數(shù)研究人員使用血細(xì)胞計(jì)數(shù)器測(cè)定細(xì)胞產(chǎn)量,并使用臺(tái)盼藍(lán)重氮染料測(cè)量細(xì)胞活力。
      7、培養(yǎng):這個(gè)適合,就可以根據(jù)所分離的細(xì)胞來選擇適臺(tái)研究的方案和處理步驟來培養(yǎng)細(xì)胞了。
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